Эволюция функциональности фермента во флавине

Новости

ДомДом / Новости / Эволюция функциональности фермента во флавине

Aug 05, 2023

Эволюция функциональности фермента во флавине

Том «Природные коммуникации»

Nature Communications, том 14, номер статьи: 1042 (2023) Цитировать эту статью

5244 Доступа

64 Альтметрика

Подробности о метриках

Среди молекулярных механизмов адаптации в биологии незаменима функциональная диверсификация ферментов. Позволяя организмам расширять свой каталитический репертуар и применять принципиально иные химические процессы, животные могут использовать или устранять вновь обнаруженные вещества и ксенобиотики, воздействию которых они подвергаются в новых средах. Здесь мы исследуем флавинсодержащие монооксигеназы (ФМО), которые необходимы для детоксикации ксенобиотиков. Используя палеобиохимический подход в сочетании с энзимологическими методами, мы раскрываем набор исторических замен, ответственных за функциональное разнообразие семейства четвероногих. Примечательно, что несколько аминокислотных замен дифференцируют предковую многозадачную FMO в более специализированную монооксигеназу путем модуляции оксигенирующего промежуточного соединения флавина. Наши результаты подтверждают текущую предпосылку о том, что ферментативная функция зависит от подмножества остатков, которое не ограничивается ядром активного центра.

Флавинсодержащие монооксигеназы (ФМО) являются ферментами и ключевыми активами в арсенале детоксикации позвоночных1,2. FMO обычно известны своей способностью превращать молекулы, содержащие гетероатомы, в водорастворимые, легко выводимые из организма оксиды3. В отличие от более специфичных гемсодержащих монооксигеназ цитохрома P4504, FMO могут размещать множество субстратов в своих активных центрах5. Более того, они также катализируют ключевые этапы активации противовоспалительных и противораковых препаратов6,7 и участвуют в эндогенном синтезе незаменимых веществ, включая таурин8. Для всех этих окислений FMO используют молекулярный кислород (O2) и НАДФН в качестве донора гидрида. Человеческие FMO связаны с заболеваниями и расстройствами, при этом триметиламинурия, широко известная как синдром запаха рыбы, является наиболее известным примером, вызванным мутациями в гене, кодирующем FMO9,10.

Геном человека кодирует пять паралогов FMO (FMO1–5) и еще один, описанный как псевдоген (FMO6)11. Интересно, что такое расположение пяти паралогов сохраняется практически у всех четвероногих. FMO 1–4 обладают по существу одинаковыми каталитическими свойствами, выполняя канонические реакции, описанные для семейства: окисление сульфида и амина (далее S/N или гетероатом)8,12. Напротив, FMO5 долгое время считался «псевдоактивным» FMO13. Лишь недавно, в 2016 году, Фиорентини и др. продемонстрировали, что человеческий FMO5 способен выполнять принципиально иную химию, внедряя атом кислорода в связь C–C кетонов и альдегидов, реакция, известная как окисление Байера-Виллигера (далее BV)14. Два разных химических процесса, окисление S/N и BV, достигаются с помощью различных каталитических механизмов, опосредованных общим оксигенирующим реакционноспособным промежуточным продуктом, C4a-(гидро)пероксифлавином, который в литературе FMO часто называют «взведенным пистолетом»15,16 (рис. 1). Окисление S/N происходит по общему механизму электрофильного замещения, при котором протонированный флавиновый промежуточный продукт атакует богатый электронами субстрат15. Напротив, в реакции BV участвует депротонированная форма C4a-пероксифлавина с образованием тетраэдрического аддукта - интермедиата Криджи - между оксигенирующим флавиновым интермедиатом и субстратом. Оксигенация BV требует структурных предварительных преобразований в активном центре для размещения частиц, образующихся во время катализа и миграции углеродного центра17. Наша предыдущая работа по реконструкции FMO млекопитающих предполагает, что различные химические процессы S/N и BV были определены у млекопитающих уже и, предположительно, при появлении каждой клады паралогов, что подразумевает существование двух разновидностей FMO, одна из которых посвящена S/N. окисления (FMO1–4), а другая — окисления BV (FMO5)18,19.

Повторяющаяся молекулярная структура представляет собой изоаллоксазиновую часть кофактора FAD, где R соответствует рибитиладенозиновому хвосту. E означает фермент. Во-первых, окисленный ФАД (Е-ФАД) восстанавливается НАДФН. Восстановленный фермент (E-FADH2) легко реагирует с O2, образуя промежуточный продукт оксигенирующего фермента C4a-флавин(гидро)пероксид (E-FADOO(H)). Отсюда возможны два механизма: окисление S/N или окисление BV, оба с последующим высвобождением H2O и НАДФ+. В отсутствие субстрата фермент подвергается бесполезному циклу производства перекиси водорода, называемому разобщением.

 0.94) (Supplementary Fig. 3). tAncFMO1-5 (\(\overline{{PP}}\) = 0.95) is the ancestor predating the first duplication event (encompassing all tetrapod FMO paralogs), while tAncFMO5 (\(\overline{{PP}}\) = 0.96) and tAncFMO1–4 (\(\overline{{PP}}\) = 0.94) are its daughter paralogs, ancestors of each functionally diverse lineage. Inside the FMO1–4 clade further duplication events occurred, the first of them originated the FMO4 clade and tAncFMO1–3 (\(\overline{{PP}}\) = 0.95) which was also resurrected. From this ancestor (tAncFMO1–3), the FMO2 group was the next to emerge, followed by FMO1 and FMO3, with the latter duplicating further solely in mammals to give rise to FMO6, a pseudogene in humans21. As the aim of ASR is to recover the phenotype of extinct molecules rather than its precise sequence, uncertainty in the reconstruction has to be taken into account26. Therefore the alternative ancestor sequences (Alt_tAncFMOs) were also obtained. These display the combination of the second-best states at all ambiguously reconstructed sites27 (see Methods)./p> 0.2. The sequences of the alternative ancestors (Alt_tAncFMOs) were generated by including altogether the second-best states for the ambiguously reconstructed sites plus the MAP states (PP > 0.8)./p> 0.8 at both nodes were selected for the next step, as these were considered true substitutions. Also, when at one of the nodes the inspected site was reconstructed with a PP < 0.8 and the alternative state (PP > 0.2) was a different than the MAP state at the other node, it was included in the selection. This first process allowed us to reduce the number of substitutions to inspect to 27. After that, the degree of conservation for each of the selected sites was analyzed employing the ConSurf server51. Those sites identified as conserved either across the entire dataset or just among the heteroatom-oxidative lineage or the BV lineage were further selected. Finally, the structural environment of each of the sites was inspected using the structures of mAncFMO5 (PDB 6SEK) as a model for the BV lineage and mAncFMO2 (PDB 6SF0) as a model for the heteroatom oxidizing lineage. Sixteen sites were detected as candidates to experimentally test. These sites where further divided into three subgroups according to their proximity to the active site and/or conservation degree. Thus 4× included 4 substitutions at the active site, 12× included the substitutions of 4× plus 8 sites and 16× included all the selected sites./p>