Уридин

Блог

ДомДом / Блог / Уридин

May 05, 2023

Уридин

Природа том 618, стр.

Nature, том 618, страницы 151–158 (2023 г.) Процитировать эту статью

18 тысяч доступов

1 Цитаты

423 Альтметрика

Подробности о метриках

Аденокарцинома протоков поджелудочной железы (ПДА) — смертельное заболевание, известное резистентностью к терапии1,2. Частично это опосредовано сложным микроокружением опухоли3, низкой васкуляризацией4 и метаболическими нарушениями5,6. Хотя изменение метаболизма способствует прогрессированию опухоли, спектр метаболитов, используемых в качестве питательных веществ PDA, остается в значительной степени неизвестным. Здесь мы идентифицировали уридин как топливо для КПК в условиях дефицита глюкозы, оценивая, как более 175 метаболитов влияют на метаболическую активность в 21 клеточной линии поджелудочной железы при ограничении питательных веществ. Утилизация уридина сильно коррелирует с экспрессией уридинфосфорилазы 1 (UPP1), которая, как мы продемонстрировали, высвобождает рибозу, полученную из уридина, для поддержания метаболизма центрального углерода и тем самым поддерживает окислительно-восстановительный баланс, выживание и пролиферацию в клетках PDA с ограниченным содержанием глюкозы. В PDA UPP1 регулируется передачей сигналов KRAS-MAPK и усиливается за счет ограничения питательных веществ. Соответственно, опухоли экспрессировали высокий уровень UPP1 по сравнению с неопухолевыми тканями, а экспрессия UPP1 коррелировала с плохой выживаемостью в когортах пациентов с ОАП. Уридин доступен в микроокружении опухоли, и мы продемонстрировали, что рибоза, полученная из уридина, активно катаболизируется в опухолях. Наконец, делеция UPP1 ограничила способность клеток PDA использовать уридин и приостановила рост опухоли на моделях иммунокомпетентных мышей. Наши данные идентифицируют использование уридина как важный компенсаторный метаболический процесс в клетках ПДА, лишенных питательных веществ, что указывает на новую метаболическую ось для терапии ПДА.

ОАП остается одним из самых смертоносных видов рака1,2. Микроокружение опухоли ОАП (ТМО) вносит основной вклад в эту летальность и характеризуется обильной инфильтрацией иммунных клеток, экспансией стромальных фибробластов и связанным с этим отложением внеклеточного матрикса. Это приводит к увеличению давления интерстициальной жидкости и коллапсу артериол и капилляров3,4,7. Эти явления в совокупности способствуют низкой насыщенности кислородом, терапевтической резистентности, метаболическим изменениям и гетерогенности опухоли на клеточном уровне5,8,9. Клетки PDA, выживающие в таком TME с дерегуляцией питательных веществ и кислорода, демонстрируют метаболическую адаптацию, которая увеличивает их очищающие и катаболические способности10,11,12,13. Кроме того, недавние исследования определили внешние источники питательных веществ для ОАП, включая внеклеточный матрикс, иммунные и стромальные метаболиты14,15,16. Хотя эти исследования выявили дискретное поступление питательных веществ, комплексные исследования, способные выявить многие такие питательные факторы и механизмы, ранее не проводились.

Для скрининга метаболитов, которые способствуют метаболизму в клетках PDA, лишенных питательных веществ, мы применили платформу фенотипического скрининга Bilog на 19 клеточных линиях PDA человека и 2 иммортализованных, доброкачественных клеточных линиях поджелудочной железы (звездчатые клетки поджелудочной железы человека и клетки, экспрессирующие нестин поджелудочной железы человека). (рис. 1а). Мы использовали скрининг для оценки способности клеток захватывать и метаболизировать более 175 питательных веществ в 96-луночном формате в условиях ограничения питательных веществ (0 мМ глюкозы, 0,3 мМ глютамина и 5% диализированной фетальной бычьей сыворотки (FBS)). Панель питательных веществ включала углеродные энергетические и азотные субстраты (дополнительная таблица 1). Метаболическую активность оценивали путем мониторинга восстановления красителя на основе тетразолия и определения клеточного восстановительного потенциала каждые 15 минут в течение примерно 3 дней (рис. 1а и расширенные данные, рис. 1а). Анализ профилей потребления питательных веществ выявил несколько метаболитов, которые в отсутствие глюкозы использовались на тех же уровнях, что и положительный контроль глюкозы (расширенные данные, рис. 1b). Например, аденозин, уридин и некоторые сахара использовались большинством клеточных линий.

а, Схема скринингового анализа метаболизма питательных веществ и корреляция с экспрессией генов в клеточных линиях и опухолях PDA. b, Корреляция Спирмена (r) между нормализованной относительной метаболической активностью (RMA) катаболизма уридина в данных скрининга и данными экспрессии мРНК UPP1 из независимого набора данных17 (16 клеточных линий PDA). Клеточные линии с высоким содержанием UPP1 показаны жирным шрифтом. c, RMA в подмножестве клеточных линий PDA после приема 1 мМ уридина в течение 3 дней в условиях отсутствия глюкозы. d, Количественная ПЦР (кПЦР) проверка экспрессии мРНК UPP1 в подмножестве клеточных линий PDA. д, Иммуноблоттинг, демонстрирующий базальную экспрессию UPP1 в клеточных линиях PDA. Блоты являются репрезентативными для трех технических повторов со схожими результатами. f, корреляция Спирмена (r) между белковым денситометрическим анализом блота в e и экспрессией мРНК UPP1 в восьми клеточных линиях PDA, выделенных на e. g, Топ-20 генов, дифференциально экспрессируемых клеточными линиями PDA, которые были идентифицированы как потребители/метаболизаторы с высоким содержанием уридина по сравнению с потребителями с низким содержанием уридина по результатам скрининга метаболизма питательных веществ. Источник данных: Энциклопедия линий раковых клеток (CCLE). Данные в c, d являются средними ± стандартное отклонение. Дополнительную информацию см. в разделе «Статистика и воспроизводимость методов».

175 metabolites by 19 PDA cell lines and 2 non-PDA pancreatic cell lines was measured every 15 min for ~3 days (74.5 h) using the Biolog OmniLog device. The assay readout, RMA, was correlated with the expression level of metabolic genes in cell lines; human PDA data were used for subsequent analyses. Nutrient-deficient medium, no glucose, 0.3 mM glutamine and 5% dialysed FBS. c, n = 4 biologically independent samples per group. Statistical significance was measured by multiple unpaired two-tailed t-tests (two-stage step-up method) comparing RMA from cells in basal medium vs 1 mM uridine medium (both glucose-free), ****P < 0.0001. The experiments were performed twice with similar results. d, n = 4 biologically independent samples per cell line. The experiment was performed once./p> 0.9999; no glucose/uridine and 1 mM ribose, P = 0.3025; no glucose/uridine and 10 mM ribose, ****P < 0.0001). ASPC1 (comparison between no glucose/uridine and no glucose + 1 mM uridine, ****P < 0.0001; no glucose/uridine and 1 mM glucose/no uridine, ****P < 0.0001; no glucose/uridine and 0.1 mM ribose, P = 0.9974; no glucose/uridine and 1 mM ribose, *P = 0.0103; no glucose/uridine and 10 mM ribose, ****P < 0.0001). The experiment was performed once. b,c, n = 3 biologically independent samples. Statistical significance was measured using two-tailed unpaired t-test. Intracellular: comparison between no uridine and 1 mM uridine: ***P = 0.0005 (uridine), ****P < 0.0001 (uracil); extracellular: comparison between no uridine and 1 mM uridine: ****P < 0.0001 (uridine), **P = 0.008 (uracil). d–f, n = 3 biologically independent samples per cell line. ‘Others’ indicates M other than M+0 or M+5, where applicable. Bars shown for PATU8988S are same as the WT bars (where applicable) for that cell line in the Extended Data Fig. 5. Tracing experiments were performed twice in these cells with similar results. g, Number of samples: sub-Q, tumours from 3 mice injected on the left and right flanks; ortho, tumours from 4 mice. Mode of uridine injection is intratumoural for sub-Q and intraperitoneal for ortho. h, Median concentration of uridine = 24.1 µM; median concentration of uracil = 90.2 µM; n = 22 biologically independent TIF samples. i, Median concentration of glucose = 3.71 mM (plasma) and 0.63 mM (TIF). n = 8 biologically independent plasma samples and 8 TIF samples extracted from 8 tumour samples from same mice. These samples are from the control group of the study in Fig. 4a. Statistical significance was measured with two-tailed unpaired t-test with Welch's correction, ****P < 0.0001. j,k, j shows the mass isotopologue distribution in uridine and k shows in the indicated metabolites. n = 4 biologically independent samples per group per cell line. ‘Others’ indicates M other than M+0 or M+5, where applicable. Data in a–k are shown as mean ± s.d. The metabolomics experiments (b–k) were performed once./p> 0.9999 and P > 0.9999 for WT, 1A and 1B groups, respectively. The experiments were performed three times with similar results. c, n = 4 biologically independent samples per group per cell line. Statistical significance was measured using one-way ANOVA with Tukey's multiple comparisons test. PATU8988S, comparison between no uridine (−) and 1 mM uridine (+): ****P < 0.0001, P > 0.9999 and P = 0.9599 for WT, 1A and 1B groups, respectively. ASPC1, comparison between no uridine (−) and 1 mM uridine (+): ****P < 0.0001, P = 0.9977 and P = 0.6537 for WT, 1A and 1B groups, respectively. The experiments were performed twice with similar results. d, n = 3 biologically independent samples per group. Statistical significance was measured using one-way ANOVA with Dunnett's multiple comparisons test. Comparison between WT and clonal cells 1A or 1B: ****P < 0.0001 (PATU8988S) and ***P = 0.0003 (ASPC1). Data are part of the metabolomics experiments shown in Extended Data Fig. 5a–c. The metabolomics experiment was performed once. e, n = 3 biologically independent samples per group. ‘Others’ indicates M other than M+0 or M+5, where applicable. Data are part of the metabolomics experiments shown in Extended Data Fig. 5e,h,j for ASPC1. The metabolomics experiment was performed once. f, Statistical significance was measured using two-tailed unpaired t-test with Welch's correction. Number of samples and statistical comparison: GSE62452 (NT, 61 vs PDA, 69, ***P = 0001), GSE71729 (middle: NT, 46 vs PDA, 145, *P = 0.0466), GSE71729 (right: primary, 145 vs liver met, PDA, 25, ****P < 0.0001). Box plot statistics: GSE42452 (NT: minimum = 3.582, maximum = 5.633, 25th percentile = 4.036, 75th percentile = 4.504, median = 4.262; PDA: minimum = 3.853, maximum = 5.989, 25th percentile = 4.37, 75th percentile = 4.843, median = 4.535); GSE71729 (NT: minimum = 2.18, maximum = 4.402, 25th percentile = 2.901, 75th percentile = 3.469, median = 3.139; PDA: minimum = 2.293, maximum = 4.725, 25th percentile = 3, 75th percentile = 3.657, median = 3.339); GSE71729 (primary: minimum = 2.293, maximum = 4.725, 25th percentile = 3, 75th percentile = 3.657, median = 3.339; liver metastasis: minimum = 3.306, maximum = 5.768, 25th percentile = 3.564, 75th percentile = 4.498, median = 4.023). g, Representative images from patient 1 of 3 tumour tissues. PanCK, pan-cytokeratin, stain indicates tumour cells. i, Number of samples: UPP1-low, 144; UPP1-high, 144. j, Number of samples: no alteration, 43; G12D, 42. Statistical significance was measured using two-tailed unpaired t-test with Welch's correction, **P = 0.0029. Box plot statistics: no alteration: minimum = 7.797, maximum = 10.66, median = 9.019, 25th percentile = 8.307, 75th percentile = 9.53; KRASG12D: minimum = 8.154, maximum = 11.3, median = 9.385, 25th percentile = 9.019, 75th percentile = 9.905. k, n = 3 biologically independent samples per cell line. Statistical significance was measured using two-tailed unpaired t-test. Comparison between Dox (−) and (+) in iKras* cell A9993: ***P = 0.0002; in iKras cell 8905: **P = 0088. The experiment was performed once. l, Vinculin is used as a loading control. The experiment was performed once. m, 3 biologically independent samples per group. Statistical significance was measured using two-tailed unpaired t-test. Comparison between cells cultured in uridine/glucose-containing medium with and without trametinib treatment: ****P < 0.0001; comparison between cells treated with and without trametinib in the presence of glucose but no uridine: ****P < 0.0001; comparison between cells treated with and without trametinib in the presence of uridine and no glucose: ****P < 0.0001; comparison between cells cultured with no uridine/glucose with and without trametinib treatment: ****P < 0.0001. The experiment was performed once. n, Vinculin is used as a loading control. The experiments were performed twice with similar results. o, Statistical significance was measured using one-way ANOVA with Tukey's multiple comparisons test. n = 4 biologically independent samples per group per cell line. PATU8988S (comparison between cells cultured with and without trametinib in the absence of uridine: ****P < 0.0001, and with uridine supplementation: ****P < 0.0001); DANG (comparison between cells cultured with and without trametinib in the absence of uridine: P = 0.9967, and with uridine supplementation: ****P = 0.0001); ASPC1 (comparison between cells cultured with and without trametinib in the absence of uridine: P = 0.9987, and with uridine supplementation: ***P = 0.0001. The experiment was performed once. Data in b–e,k,m,o are mean ± s.d./p> 25 tissues compared). c. Data obtained from the Human Protein Atlas (URL for ‘Normal’ - https://www.proteinatlas.org/ENSG00000183696-UPP1/tissue/pancreas; PDA – https://www.proteinatlas.org/ENSG00000183696-UPP1/pathology/pancreatic+cancer#img). d. Sample size, n: NT = 19, tumour = 408 (bladder cancer, TCGA); NT = 5, tumour = 154 (glioblastoma, TCGA); NT = 44, tumour = 520 (head and neck cancer, TCGA); NT = 59, tumour = 551 (lung cancer, TCGA); NT = 11, tumour = 184 (oesophageal cancer, TCGA); NT = 52, tumour = 497 (prostate cancer, TCGA); NT = 41, tumour = 452 (colon cancer); health colon mucosa = 50, distant colon = 98, tumour = 98 (colon cancer, GSE44076). NT – non-tumour/adjacent normal tissue. Data (a-b, f) shown as mean ± s.d. The experiments were performed three times with similar results. Box plot statistics – TCGA, bladder carcinoma (primary: minima = 5.83, maxima = 13.5, median = 9.77, 25th percentile = 9.015, 75th percentile = 10.47; normal: minima = 6.61, maxima = 12.43, median = 8.35, 26th percentile = 8.03, 75th percentile = 9.59); glioblastoma multiforme (primary: minima = 5.71, maxima = 11.84, median = 9.585, 25th percentile = 8.79, 75th percentile = 10.143; normal: minima = 7.04, maxima = 7.63, median = 7.4, 25th percentile = 7.36, 75th percentile = 7.61); head and neck squamous cell carcinoma (primary: minima = 6.59, maxima = 15.64, median = 10.75, 25th percentile = 9.787, 75th percentile = 11.565; normal: minima = 6.38, maxima = 13.73, median = 10.42, 25th percentile = 8.672, 75th percentile = 11.065); lung adenocarcinoma (primary: minima = 6.45, maxima = 13.44, median = 9.8, 25th percentile = 9.13, 75th percentile = 10.49; normal: minima = 8.3, maxima = 11.39, median = 9.3, 25th percentile = 8.945, 75th percentile = 9.93); esophageal carcinoma (primary: minima = 6.7, maxima = 13.08, median = 9.26, 25th percentile = 8.578, 75th percentile = 10.21; normal: minima = 6.17, maxima = 12.39, median = 7.62, 25th percentile = 6.7, 75th percentile = 8.26); prostate adenocarcinoma (primary: minima = 3.96, maxima = 9.69, median = 6.58, 25th percentile = 5.98, 75th percentile = 7.14; normal: minima = 4.56, maxima = 8.62, median = 6.97, 25th percentile = 6.447, 75th percentile = 7.24); colon cancer (primary: minima = 6.41, maxima = 12.96, median = 8.535, 25th percentile = 8.068, 75th percentile = 9.07; normal: minima = 7.76, maxima = 11.29, median = 9.57, 25th percentile = 9.09, 75th percentile = 9.92). Colon cancer (GSE44076, primary: minima = 4.564, maxima = 7.608, median = 5.917, 25th percentile = 5.487, 75th percentile = 6.405; normal: minima = 4.568, maxima = 9.154, median = 7.18, 25th percentile = 6.781, 75th percentile = 7.824; healthy colon mucosal cells: minima = 5.884, maxima = 8.279, median = 7.529, 25th percentile = 7.153, 75th percentile = 7.74). Statistical significance was tested using two-sided Wilcoxon or Kruskal-Wallis tests./p>0.9999). h. n = 3 biologically independent samples per group. Statistical significance was measured with one-way ANOVA with Tukey's multiple comparisons test. Comparisons between groups (from left to right): ****P < 0.0001, ****P < 0.0001, ****P < 0.0001 and ****P < 0.0001. The experiments (e, g, h) were performed once with similar results on UPP1 displayed by the three cell lines. i. n = 3 biologically independent samples per group. This blot was run on the same gel as Fig. 3n hence the first two columns (separated by a box) overlap between the two blots. j. Blots (c,i) are representative of two independent experiments; blot e experiment was done once. k. n = 3 biologically independent samples per group. The statistical significance (P < 0.05) was determined using limma package version 3.38.3 in R. l. Statistical significance was measured using one-way ANOVA with Tukey's multiple comparisons test. n = 4 biologically independent samples per group. PATU8988S (comparison between cells cultured with and without trametinib in the absence of uridine: ****P < 0.0001, and with uridine supplementation: ****P < 0.0001); DANG (comparison between cells cultured with and without trametinib in the absence of uridine: **P = 0.0055, and with uridine supplementation: ***P = 0.0009); ASPC1 (comparison between cells cultured with and without trametinib in the absence of uridine: P = not significant, and with uridine supplementation: ****P = 0.0006). Data (b, e, g-h, l) shown as mean ± s.d./p>0.9968), and sgV and sg3 P = ns (0.9583). Data (a, b, d, e) shown as mean ± s.d; horizontal bars in h represent mean value./p>